Trong ứng dụng thực tế của các dự án quy trình MBBR, người ta thường nghe nói nhiều bạn mới thử quy trình đều nói rằng khó treo phim phụ, không treo được phim, v.v. Có sự khác biệt đáng kể giữa chất độn sinh học MBBR và chất độn giường cố định thường được sử dụng, đồng thời có nhiều yếu tố ảnh hưởng đến việc liệu chúng có thể hình thành màng nhanh chóng và hiệu quả hay không. Ví dụ, chất lượng của chất độn, giá trị pH, nhiệt độ và tốc độ sục khí đều có thể ảnh hưởng đến tốc độ và hiệu quả hình thành màng.
MBBRgiai đoạn bố trí
Khi thêm chất độn, hãy quan sát xem có hiện tượng tích tụ nào không. Sau khi tích lũy xảy ra, ngừng thêm. Tiếp tục quan sát ngày hôm sau trước khi bổ sung. 2. Khi thêm chất độn, sử dụng sục khí gián đoạn, sục khí liên tục vào ban đêm, nhưng cần giảm lượng sục khí.
Sau khi chạy được 24 giờ, liên tục đưa nước vào trong 2-3 giờ rồi tiếp tục quá trình sục khí như trên. Sau khi chạy 48 giờ, quan sát sự hình thành màng trên bao bì và tăng lượng nước vào để kéo dài thời gian nước vào. Kiểm tra trạng thái oxy hòa tan trong bể, tốt nhất là duy trì ở mức khoảng 1.5-2.0mg/L. Sau 72 giờ vận hành, tiếp xúc với nước đầu vào và tăng dần theo yêu cầu thiết kế. Theo kiểm tra định kỳ chất lượng nước đầu vào và đầu ra, dự kiến sẽ đáp ứng yêu cầu chất lượng nước thiết kế trong khoảng 7 ngày.
Giai đoạn nuôi cấy màng sinh học
Việc nuôi cấy màng sinh học đề cập đến việc sử dụng một số phương pháp nhất định để tạo ra và tích lũy một lượng vi sinh vật nhất định trong hệ thống xử lý và đạt được độ dày nhất định của màng sinh học trên vật liệu đóng gói. Các phương pháp canh tác chủ yếu bao gồm canh tác tĩnh và canh tác động.
canh tác tĩnh
Cái gọi là canh tác tĩnh là để ngăn chặn các vi sinh vật mới hình thành chảy theo nước, cung cấp nhiều thời gian tiếp xúc giữa vi sinh vật và lớp đóng gói nhất có thể, đồng thời đẩy nhanh quá trình hình thành màng sinh học. Trong giai đoạn đầu, để tránh chất dinh dưỡng duy nhất trong nước thải, BOD5 được sử dụng mỗi ngày một lần; N: Bổ sung các chất dinh dưỡng như urê, diamine và đường trắng theo tỷ lệ 00:5:1. Đầu tiên, bơm bùn đã cấy (10% thể tích hiệu quả sinh hóa) và bơm nước thải vào bể sinh hóa, sau đó bắt đầu canh tác sục khí. Thể tích xếp chồng chất độn trong bể sinh hóa phải bằng 35% đến 40% thể tích hiệu dụng của bể phản ứng. Để yên trong 4-5 giờ mà không sục khí, để vi sinh vật cố định cấy vào vật liệu đóng gói, sau đó sục khí trong 1 giờ, để yên trong 2 giờ, sục khí trong 1 giờ, lặp lại quy trình. Sau 4-5 ngày, bề mặt của lớp đệm đã được bao phủ hoàn toàn bằng màng sinh học và vào ngày thứ 6, dòng nước chảy vào thấp liên tục bắt đầu.
Canh tác năng động
Sau 6 ngày nuôi cấy phơi nhiễm, một lớp màng sinh học mỏng màu nâu vàng đã phát triển trên bề mặt vật liệu đóng gói. Do đó, dòng nước vào liên tục được sử dụng cho canh tác động và dòng nước vào được điều chỉnh để kiểm soát lượng oxy hòa tan trong khoảng 2-4mg/L (được đo bằng máy đo lượng oxy hòa tan). Sau khoảng 15 ngày, trên vật liệu trám có xuất hiện một số amip và côn trùng lang thang (quan sát dưới kính hiển vi sinh học), khi sờ tay vào có cảm giác dính và trơn. Sau 20 ngày, các động vật nguyên sinh như roi, giun chuông và vi khuẩn paramecium tự do xuất hiện. Sau 20 ngày nuôi cấy, sự xuất hiện của các hậu động vật nguyên sinh như luân trùng, tuyến trùng chứng tỏ màng sinh học đã phát triển. Hoạt động công nghiệp liên tục có thể bắt đầu.
Giai đoạn thuần hóa của màng sinh học
Mục đích của việc thuần hóa là chọn lọc các vi sinh vật phù hợp với tình hình chất lượng nước thực tế, loại bỏ các vi sinh vật vô dụng, đối với các quá trình xử lý có chức năng khử nitrat và loại bỏ phốt pho, việc thuần hóa có thể làm cho vi khuẩn nitrat hóa, vi khuẩn khử nitrat và vi khuẩn tích lũy phốt pho trở thành nhóm vi khuẩn chiếm ưu thế. . Cách tiếp cận cụ thể trước tiên là duy trì hoạt động bình thường của quy trình, sau đó kiểm soát chặt chẽ các thông số kiểm soát quy trình. Lượng oxy hòa tan trung bình (DO) phải được kiểm soát trong khoảng {{0}}mg/l và thời gian sục khí của bể hiếu khí không được ít hơn 5 giờ. Trong quá trình này, các chỉ số chất lượng nước và thông số kiểm soát khác nhau phải được đo hàng ngày. Khi độ dày trung bình của màng sinh học khoảng 0.2-0.5mm, quá trình nuôi cấy màng sinh học thành công cho đến khi nước thải BOD5, SS, CODCr và các chỉ số khác đáp ứng yêu cầu thiết kế.
Lựa chọn chất độn sinh học MBBR
1. Chất liệu
Quy trình MBBR là loại quy trình mới chỉ cần bổ sung một lần mà không cần thay thế chất độn sinh học nên yêu cầu về vật liệu rất cao. Thông thường, vật liệu HDPE có độ tinh khiết cao được lựa chọn làm chất độn sinh học có tuổi thọ trên 15 năm. Nếu sử dụng vật liệu kém chất lượng sẽ dễ khiến chất độn sinh học bị vỡ và tắc nghẽn đường ống trong kỹ thuật sử dụng sau này.
2. Cấp độ quy trình sản xuất
Chất độn sinh học được thiết kế với cấu trúc hình học thông qua cơ học chất lỏng, thường là hình trụ và xốp. Trong kỹ thuật sản xuất, yêu cầu về công nghệ quy trình sản xuất đối với nhà sản xuất là vô cùng cao, từ phát triển khuôn mẫu đến máy móc sản xuất chuyên nghiệp và điều chỉnh nhiệt độ, tốc độ trong quá trình sản xuất. Ví dụ, một số chất độn sinh học có độ dày thành không đồng đều dễ có độ bền không đủ.
3. Diện tích bề mặt riêng
Diện tích bề mặt riêng của chất độn sinh học ảnh hưởng trực tiếp đến số lượng vi sinh vật nuôi cấy trên một mét khối nước, càng nuôi cấy nhiều vi sinh vật thì khả năng xử lý nước thải càng mạnh. Tuy nhiên, trong việc lựa chọn chất độn thực tế, không chỉ cần xem xét diện tích bề mặt cụ thể của chất độn sinh học mà còn cả đường kính và kích thước lỗ rỗng của chất độn. Đường kính của chất độn có liên quan đến khẩu độ của lưới đánh chặn. Kích thước lỗ chân lông của chất độn không chỉ ảnh hưởng đến diện tích bề mặt cụ thể mà còn ảnh hưởng đến việc màng sinh học lão hóa có dễ rơi ra hay không. Hiện nay, một số chất độn sinh học MBBR trên thị trường có diện tích bề mặt riêng lớn nhưng lỗ rỗng nhỏ. Hiệu quả treo màng ban đầu và sau xử lý là tốt, nhưng sau một hoặc hai năm hoạt động thực tế, màng sinh học lão hóa không thể bong ra, dẫn đến chất lượng nước kém ở giai đoạn sau.